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    細胞培養

    產品簡介:細胞培養是指從動物活體體內取出組織,于模擬體內生理環境等特定的體內條件下,進行孵育培養,使之生存并生長。該技術現已廣泛應用于生物學、醫學、新藥研發等各個領域。培養過程中,涉及到多個基本實驗操作,例如:復蘇、換液、傳代、凍存等。

    產品型號:

    更新時間:2026-01-11

    廠商性質:生產廠家

    訪 問 量 :3152

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    021-51216810

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    產品介紹

    一、產品介紹

    細胞培養也叫細胞克隆技術,在生物學中的正規名詞為細胞培養技術。通過細胞培養得到大量的細胞或其代謝產物。細胞的生長需要營養環境,用于維持細胞生長的營養基質稱為培養基。培養基按其物理狀態可分為液體培養基和固體培養基。

    細胞培養是指從動物活體體內取出組織,于模擬體內生理環境等特定的體內條件下,進行孵育培養,使之生存并生長。細胞培養現已廣泛應用于生物學、醫學、新藥研發等各個領域。

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    二、過程介紹

    細胞培養過程中,涉及到多個基本實驗操作,例如:復蘇、換液、傳代、凍存等。

    復蘇

    1.把凍存管從液氮中取出來,立即投入37℃水浴鍋中,輕微搖動(注意防止蓋子不緊致使液體進入凍存管)。液體都融化后(大概1-1.5分鐘),拿出來噴點酒精放到超凈工作臺里。

    2.把上述細胞懸液吸到裝10ml培養基的15ml的離心管中(用培養基把凍存管洗一遍,把粘在壁上的細胞都洗下來),1000轉離心5分鐘。

    3.把上清液倒掉,加1ml培養基把細胞懸浮起來。吸到裝有10ml培養基的10cm培養皿中前后左右輕輕搖動,使培養皿中的細胞均勻分布。

    4.標好細胞種類和日期、培養人名字等,放到37℃的5%CO2培養箱中培養。

    5.根據細胞增長速度2-3天換一次培養基。



    換液(以貼壁細胞為例)

    1.培養一段時間后,細胞還未長滿,而細胞培養基顏色由紅色逐漸變黃,說明培養基中營養物質不足,需要及時換液。

    2.吸掉原有培養基。

    3.加入等體積新的*培養基。

    4.放到37℃的5%CO2培養箱中繼續培養。

    5.培養過程中,要定期觀察細胞狀態。如果細胞密度達到80%-90%需要準備傳代。


    傳代(以貼壁細胞為例)

    1.培養皿中的細胞覆蓋率達到80%-90%時要傳代。

    2.把原有培養基吸掉。

    3.加適當的胰蛋白酶(能覆蓋細胞就行),消化1-2分鐘。

    4.細胞都變圓后加入等體積的含血清的培養基終止消化。

    5.用移液槍吹打細胞,讓細胞懸浮起來。

    6.把細胞吸到10ml或15ml的離心管中,1000轉離心5分鐘。

    7.倒掉上清液,加1-2ml培養基,把細胞都吹起來。

    8.根據細胞種類把細胞傳到幾個培養皿中,一般1: 2~3傳代。


    凍存

    把細胞消化下來并離心(同上)。用配好的凍存液把細胞懸浮起來,分裝到滅菌的凍存管中,靜止幾分鐘,寫明細胞種類,凍存日期。4℃ 30min,-20℃ 30min,-80℃ 過夜,然后放到液氮灌中保存。

    凍存液的配制:80%的*培養基+10?S+10%DMSO。注意:DMSO要慢慢滴加,邊滴邊搖。


    三、根據細胞生長的恃點,需要選擇不同方法進行細胞傳代

    ◆ 貼壁生長的細胞用消化法傳代;

    ◆ 部分貼壁生長(半懸浮生長)的細胞用直接吹打可傳代;

    ◆ 懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打傳代。

    1.  貼壁細胞的消化法傳代:

    1)先吸除或倒掉瓶內舊培養液。

    2)D-Hanks液洗2~3次。

    3)向瓶內加入適量消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養瓶,使消化液流遍所有細胞表面。(注意:胰蛋白酶要預溫,溫度37℃左右為宜。)

    4)消化最好在37℃環境下進行,消化2~5 min 后把培養瓶放置顯微鏡下進行觀察,發現胞質回縮,細胞間隙增大后,應立即終止消化。

    5)吸除或倒掉消化液,如用EDTA消化,需加Hanks液數毫升,輕輕轉動培養瓶把殘留消化液沖掉,再添加培養液。如僅用胰蛋白酶可直接加少許含血清的培養液,終止消化。

    6)用彎頭吸管,吸取瓶內培養液,反復吹打瓶壁細胞。從培養瓶底部一邊開始到另一邊結束,以確保所有底部都被吹到,使細胞脫離瓶壁后形成細胞懸液。吹打時動作要輕柔,不要用力過猛。

    7) 細胞計數后分別接種在新的培養瓶內。

    8)置于37℃細胞培養箱培養。(注意:要定時觀察細胞,如發現污染,應及時處理。)


    2.  懸浮細胞的傳代:懸浮細胞傳代可離心收集細胞后傳代,或直接傳代。

    離心傳代法:

    1) 將細胞連同培養液一并轉移到15 ml 離心管內。

    2) 800~1000 rpm離心5 min。(注意:離心轉速要合適。轉速過低,不能有效分離細胞;離心速度過大,時間過長,會擠壓細胞造成損傷甚至死亡。)

    3) 棄去上清,加新的培養液到離心管內,用吸管吹打形成細胞懸液。

    4) 計數,分別接種在新的培養瓶內。

    直接傳代法:讓懸浮細胞慢慢沉淀在瓶底后,將上清液吸掉1/2~2/3,然后用吸管吹打形成細胞懸液后再傳代。


    3.  部分貼壁細胞的傳代

    1)部分貼壁不牢的細胞,如Hela細胞等,不經消化處理直接吹打可使細胞從壁上脫落下來,而進行傳代。

    2)對絕大部分貼壁生長的細胞,因直接吹打對細胞損傷較大,細胞常有較大數量的丟失,因而需消化后,才能吹打傳代。


    四、細胞培養優缺點

    優點:

    1)能長期傳代,保持活性,便于監控檢測結構功能和生命活動。

    2)培養條件可以人為的控制便于研究細胞代謝、物理、化學、生物因素的影響

    3)可用于各種觀察和檢測手段研究活細胞的變化(變異、分化)。可從細胞水平開展亞細胞結構和代謝分子的表達。

    4)研究范圍和細胞來源廣泛,選擇性廣。

    5)不同代次細胞可長期保存,既可開展同代次不同條件和方法研究,又可觀察不同代次的動態變化。

    6)耗資少、經濟、成本低、可大量培養,利于生物制品的生產。

    缺點:

    細胞或組織生長在人工環境中,與體內環境存在差異,細胞或組織的形態或功能會發生不同程度的改變。

     

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